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細胞培養(yǎng)中的注意事項
更新時間:2015-09-18 點擊次數(shù):1431次
  
  
  1冷凍管應如何解凍?
  
  取出冷凍管后,須立即放入37C水槽中快速解凍,輕搖冷凍管使其在1分鐘內(nèi)全部融化,并注意水面不可超過冷凍管蓋沿,否則易發(fā)生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時,必須注意安全,預防冷凍管之爆裂。
  
  2細胞冷凍管解凍培養(yǎng)時,是否應馬上去除DMSO?
  
  除少數(shù)特別注明對DMSO敏感之細胞外,絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞),在解凍之后,應直接放入含有10-15ml新鮮培養(yǎng)基之培養(yǎng)角瓶中,待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除DMSO即可,如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附之問題。
  
  3可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基?
  
  不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應之細胞培養(yǎng)基,若驟然使用和原先提供之培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基,細胞大都無法立即適應,造成細胞無法存活。
  
  4可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之血清種類?
  
  不能。血清是細胞培養(yǎng)上一個極為重要的營養(yǎng)來源,所以血清的種類和品質對于細胞的生長會產(chǎn)生極大的影響。來自不同物種的血清,在一些物質或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。
  
  5何謂FBS,FCS,CS,HS?
  
  FBS(fetalbovineserum)和FCS(fetalcalfserum)是相同的意思,兩者都是指胎牛血清,F(xiàn)CS乃錯誤的使用字眼,請不要再使用。CS(calfserum)則是指小牛血清。HS(horseserum)則是指馬血清。
  
  6培養(yǎng)細胞時應使用5%或10%CO2?或根本沒有影響?
  
  一般培養(yǎng)基中大都使用HCO3-/CO32-/H+作為pH的緩沖系統(tǒng),而培養(yǎng)基中NaHCO3的含量將決定細胞培養(yǎng)時應使用的CO2濃度。當培養(yǎng)基中NaHCO3含量為每公升3.7g時,細胞培養(yǎng)時應使用10%CO2;當培養(yǎng)基中NaHCO3為每公升1.5g時,則應使用5%CO2培養(yǎng)細胞。
  
  7何時須更換培養(yǎng)基?
  
  視細胞生長密度而定,或遵照細胞株基本數(shù)據(jù)上之更換時間,按時更換培養(yǎng)基即可。
  
  8培養(yǎng)基中是否須添加抗生素?
  
  除于特殊篩選系統(tǒng)中外,一般正常培養(yǎng)狀態(tài)下,培養(yǎng)基中不應添加任何抗生素。
  
  9附著性細胞繼代時所使用之trypsin-EDTA濃度?應如何處理?
  
  一般使用之trypsin-EDTA濃度為0.05%trypsin-0.53mMEDTA.4Na。*次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中,保存于–20C,避免反復冷凍解凍造成trypsin之活性降低,并可減少污染之機會。
  
  10懸浮性細胞應如何繼代處理?
  
  一般僅需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)角瓶中,稀釋細胞濃度即可,若培養(yǎng)液太多時,可將培養(yǎng)角瓶口端稍微抬高,直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細胞之培養(yǎng)液至另一新的培養(yǎng)角瓶,加入新鮮培養(yǎng)基稀釋至適當濃度,重復前述步驟即可。
  
  11欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應為多少轉速?
  
  欲回收動物細胞,其離心速率一般為300xg(約1,000rpm),5-10分鐘,過高之轉速,將造成細胞死亡。
  
  12細胞之接種密度為何?
  
  依照細胞株基本數(shù)據(jù)上之接種密度或稀釋分盤之比例接種即可。細胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長之一重要原因。
  
  13細胞冷凍培養(yǎng)基之成份為何?
  
  動物細胞冷凍保存時zui常使用的冷凍培養(yǎng)基是含5-10%DMSO(dimethylsulfoxide)和90-95%原來細胞生長用之新鮮培養(yǎng)基均勻混合之。注意:由于DMSO稀釋時會放出大量熱能,故不可將DMSO直接加入細胞液中,必須使用前先行配制完成。
  
  14DMSO之等級和無菌過濾之方式為何?
  
  冷凍保存使用之DMSO等級,必須為Tissueculturegrade之DMSO(如SigmaD2650),其本身即為無菌狀況,*次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中,保存于4C,避免反復冷凍解凍造成DMSO之裂解而釋出有害物質,并可減少污染之機會。若要過濾DMSO,則須使用耐DMSO之Nylon材質濾膜。
  
  15冷凍保存細胞之方法?
  
  冷凍保存方法一:冷凍管置于4C30~60分鐘→(-20C30分鐘)→-80C16~18小時(或隔夜)→液氮槽vaporphase長期儲存。
  
  冷凍保存方法二:冷凍管置于已設定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3C至–80C以下,再放入液氮槽vaporphase長期儲存。*-20C不可超過1小時,以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80C冰箱中,惟存活率稍微降低一些。
  
  16細胞欲冷凍保存時,細胞冷凍管內(nèi)應有多少細胞濃度?
  
  冷凍管內(nèi)細胞數(shù)目一般為1x106cells/mlvial,融合瘤細胞則以5x106cells/mlvial為宜。
  
  17應如何避免細胞污染?
  
  細胞污染的種類可分成細菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉?jié){菌。主要的污染原因為無菌操作技術不當、操作室環(huán)境不佳、污染之血清和污染之細胞等。嚴格無菌操作技術、清潔的環(huán)境、與品質良好之細胞來源和培養(yǎng)基配制是減低污染之方法。
  
  18如果細胞發(fā)生微生物污染時,應如何處理?
  
  加入相應抗生素,直接滅菌后丟棄之。
  
  19支原體(mycoplasma)污染的細胞,是否能以肉眼觀察出異狀?
  
  不能。除極有經(jīng)驗之專家外,大多數(shù)遭受支原體污染的細胞株,無法以其外觀分辨之。
  
  20支原體污染會對細胞培養(yǎng)有何影響?
  
  支原體污染幾乎可影響所有細胞之生長參數(shù),代謝及研究任一數(shù)據(jù)。故進行實驗前,必須確認細胞為mycoplasma-free,實驗結果之數(shù)據(jù)方有意義。
  
  21偵測出細胞株有支原體污染時,該如何處理?
  
  直接滅菌后丟棄,以避免污染其它細胞株。
  
  22CO2培養(yǎng)箱之水盤如何保持清潔?
  
  定期(至少每兩周一次)以無菌蒸餾水或無菌去離子水更換之。
  
  23為何培養(yǎng)基保存于4C冰箱中,顏色會偏暗紅色,且pH值會越來越偏堿性?
  
  培養(yǎng)基保存于4C冰箱中,培養(yǎng)基內(nèi)之CO2會逐漸溢出,造成培養(yǎng)基越來越偏堿性,而培養(yǎng)基中之酸堿指示劑(通常為phenolred)的顏色也會隨堿性增加而更偏暗紅。培養(yǎng)基偏堿之結果,將造成細胞生長停滯或死亡。若培養(yǎng)基偏堿時,可以通入無菌過濾之CO2,以調整pH值。
  
  24各種細胞培養(yǎng)用的dish,flask是否均相同?
  
  不同廠牌的dish或flask,其所coating的polymer不同,制造程序亦不同,雖對大部分細胞沒有太大之影響,惟少數(shù)細胞則可能因使用廠牌不同之dish或flask而有顯著之生長差異。
  
  25購買之細胞冷凍管經(jīng)解凍后,為何會發(fā)生細胞數(shù)目太少之情形?
  
  研究人員在冷凍細胞之培養(yǎng)時出現(xiàn)細胞數(shù)目太少,大都是因為離心過程操作上的失誤,造成細胞的物理性損傷,以及細胞流失。建議細胞解凍后不要立刻離心,應待細胞生長隔夜后再更換培養(yǎng)基即可。
  
  26購買之細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因?
  
  研究人員在細胞培養(yǎng)時出現(xiàn)存活率不佳,常見原因可歸納為:培養(yǎng)基使用錯誤或培養(yǎng)基品質不佳。血清使用錯誤或血清的品質不佳。解凍過程錯誤。冷凍細胞解凍后,加以洗滌細胞和離心。懸浮細胞誤認為死細胞。培養(yǎng)溫度使用錯誤。細胞置于–80C太久。
  
  27收到之冷凍管瓶身破裂,瓶蓋有裂紋,或瓶蓋脫落之原因?
  
  冷凍管瓶蓋裂紋,或瓶身破裂,可能是因為操作者夾取冷凍管時用力不當,造成冷凍管裂損,建議使用止血鉗小心夾取。另冷凍管瓶蓋松動或松脫,乃因熱脹冷縮之物理現(xiàn)象,冷凍管有可能因此而造成細胞污染,故冷凍管于放入和取出液氮桶時,均應立刻將冷凍管再一次扭緊。
  
  28如何選用特殊細胞系培養(yǎng)基?
  
  培養(yǎng)某一類型細胞沒有固定的培養(yǎng)條件。在MEM中培養(yǎng)的細胞,很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長??傊?,MEM做粘附細胞培養(yǎng)、RPMI-1640做懸浮細胞培養(yǎng)是一個好的開始,各種目的無血清培養(yǎng)AIMV(12005)培養(yǎng)基(SFM)。
  
  29L-谷氨酰胺在細胞培養(yǎng)中重要嗎?它在溶液中不穩(wěn)定嗎?
  
  L-谷氨酰胺在細胞培養(yǎng)時是重要的。脫掉氨基后,L-谷氨酰胺可作為培養(yǎng)細胞的能量來源、參與蛋白質的合成和核酸代謝。L-谷氨酰胺在溶液中經(jīng)過一段時間后會降解,但是確切的降解率一直沒有zui終定論。L-谷氨酰胺的降解導致氨的形成,而氨對于一些細胞具有毒性。
  
  30GlutaMAX-I是什么?培養(yǎng)細胞如何利用GlutaMAX-I?這個二肽有多穩(wěn)定?
  
  GlutaMAX-I二肽是一個L-谷氨酰胺的衍生物,其不穩(wěn)定的alpha-氨基用L-丙氨酸來保護。一種肽酶逐漸裂解二肽,釋放L-谷氨酰胺供利用。GlutaMAX-I二肽非常穩(wěn)定,即使在121磅滅菌20分鐘,GlutaMAX-I二肽溶液有zui小的降解,如果在相同條件下,L-谷氨酰胺幾乎*降解。
  
  31什么培養(yǎng)基中可以省去加酚紅?
  
  酚紅在培養(yǎng)基中被用來作為PH值的指示劑:中性時為紅色,酸性時為黃色,堿性時為紫色。研究表明,酚紅可以模擬固醇類激素的作用,(特別是雌激素)。為避免固醇類反應,培養(yǎng)細胞,尤其是哺乳類細胞時,用不加酚紅的培養(yǎng)基。由于酚紅干擾檢測,一些研究人員在做流式細胞檢測時,不使用加有酚紅的培養(yǎng)基。
  
  32培養(yǎng)基中丙酮酸鈉的作用是什么?
  
  丙酮酸鈉可以作為細胞培養(yǎng)中的替代碳源,盡管細胞更傾向于以葡萄糖作為碳源,但是,如果沒有葡萄糖的話,細胞也可以代謝丙酮酸鈉。
  
  33目錄上說,Hank’s平衡鹽溶液(HBS)要在空氣中使用,不需要CO2培養(yǎng)箱。原因是什么?Hank’s平衡鹽溶液(HBS)和Earle’s平衡鹽溶液(EBS)有什么本質的功能差別?
  
  HBS和EBS的主要差別在于碳酸氫鈉的水平,在Eagles(2.2g/L)中比在Hanks(0.35g/L)中高。碳酸氫鈉需用高水平的CO2平衡,以維持溶液的PH值。Eagles液在空氣水平的CO2中,溶液會變堿,Hanks液在CO2培養(yǎng)箱中會變酸。如果希望在CO2培養(yǎng)箱中保存組織,需要用Eagles液,。如果僅僅是清洗將要在細胞培養(yǎng)基中儲存的組織,用Hanks液就可以了。
  
  34二價離子抑制胰蛋白酶活性嗎?使用胰蛋白酶時加入EDTA的目的是什么?
  
  二價離子的確抑制胰蛋白酶活性。EDTA用來螯合游離的鎂離子和鈣離子,以便保持抑制胰蛋白酶的活性。建議胰蛋白酶處理細胞前,用EDTA清洗細胞,以消除來自培養(yǎng)基中所有的二價離子。
  
  35當在無血清培養(yǎng)基中添加抗生素時,降低至少在有血清培養(yǎng)基中所使用濃度的50%。血清蛋白會結合和滅活一些抗生素。在無血清培養(yǎng)條件下,抗生素不被滅活,可能對于細胞達到毒性水平。
  
  36一旦您在新鮮培養(yǎng)基中添加了血清和抗生素時,您應該在兩到三周內(nèi)使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍后就開始降解。
  
  37大部分添加物和試劑zui多可以凍融3次,如果次數(shù)更多都會在包含蛋白的溶液引起一定水平的降解和沉淀,將會影響它的性能。
  
  38在溶解的一周內(nèi)使用貯存在4℃冰箱中的液體胰蛋白酶溶液。胰蛋白酶在4℃就可能開始降解,如果在室溫下放置超過30分鐘,就會變得不穩(wěn)定。